Анализ изменчивости количественных признаков у регенерантов Cupressus macrocarpa in vitro

Т.П. Кунаховец (Кunakhovec Т.P.); В.В. Самойлович (Samoilovich V.V.); О.А. Кудряшова (Kudryashova O.A.); А.А. Волотович (Volotovich A.A.); Л.А. Жизневская (Zhiznevskaya L.А.); О.Ю. Артемчук (Artemchuk О.U.)

Authors

Т.П. Кунаховец (Кunakhovec Т.P.)
В.В. Самойлович (Samoilovich V.V.)
О.А. Кудряшова (Kudryashova O.A.)
А.А. Волотович (Volotovich A.A.)
Л.А. Жизневская (Zhiznevskaya L.А.)
О.Ю. Артемчук (Artemchuk О.U.)

Abstract

В настоящей статье приведены результаты анализа изменчивости четырех количественных признаков у регенерантов кипариса крупноплодного Сupressus macrocarpa Hartw. & Gordon in vitro на питательных, агаризованных средах с органическими соединениями, на макро-, микросолевой основе Андерсона, различающихся по составу ауксинов (ИУК и ИМК) и цитокинина (зеатин). Достоверные (в большинстве случаев при Р<0,01) отличия по сравнению с контролем наблюдались только в вариантах опыта с 0,1 мг/л зеатинa. При этом в зависимости от варианта опыта, количество побегов увеличивалось достоверно в 1,3–2,0 раза; сырой вес регенерантов увеличивался в 1,6–2,2 раза. Высота регенерантов достоверно (при Р<0,05) уменьшалась в 1,2 раза в присутствии 0,1 мг/л зеатина и ИМК в концентрациях 0,1–0,5 мг/л. Установлены тенденции изменчивости анализируемых признаков с ростом концентраций исследуемых фитогормонов. Одно-факторный дисперсионный анализ установил достоверное (при P<0,01) влияние фактора 'варианты опыта' на изменчивость количества побегов и сырого веса регенерантов с долями влияния фактора 92% и 73%, соответственно. = In the present article are given the results of the analysis of variability of four quantitative traits at regenerants of Monterey cypress Cupressus macrocarpa Hartw. & Gordon in vitro on nutrient, agarized Anderson's mediums with organic compounds, on macro- and microsalt basis differing on structure of auxins (IAA and IBA), and cytokinin zeatin. Reliable differences in most cases at P<0.01 were observed only in experience variants with zeatin of 0.1 mg per liter in comparison with control. Thus, depending on experience variant the number of shoots increased authentically by 1.3–2.0 times; the crude weight of regenerants increased by 1.6–2.2 times. Height of regenerants authentically (at P<0.05) decreased by 1.2 times in the presence of 0.1 mg/l of zeatin and IBA in concentration of 0.1–0.5 mg/l. Tendencies of varia-bility of analyzed traits with growth of concentration of studied phytohormones are established. The onefactorial dispersive analysis established reliable (at P<0.01) 'experience variants' factor influence on variability of number of shoots and crude weight of regenerants with shares of influence of factor of 92% and 73%, respectively.

References

Greenwood, M.S. Maturation as a developmental process / M.S. Greenwood, K.W. Hutchison. – Clonal forestry. – New York: Springer, 1993. – P. 14–33.

Klimaszewska, K. Recent progress in somatic embryogenesis of four Pinus spp. / K. Klimaszewska, J.-F. Trontin, M.R. Becwar, C. Devillard, Y.-S. Park, M.A. Lelu-Walter // Glob. Sci. Books Tree For Sci. Biotechnol. –

– Vol. 1. – P. 11–25.

De Klerk, G.J. Effectiveness of indoleacetic acid, indolebutyric acid and naphthaleneacetic acid during adven-titious root formation in vitro in Malus «Jork 9» / G.J. De Klerk, J. Ter Brugge, S. Marinova // Plant Cell Tissue Organ Cult. – 1997. – Vol. 49. – P. 39–44.

Li, S.W. Mediators, genes and signaling in adventitious rooting / S.W. Li, L. Xue, S. Xu, H. Feng, L. An // Bot. Rev. – 2009. – Vol. 75. – P. 230–247.

Wiesman, Z. Paclobutrazol and ureaphosphate increase rooting and survival of peach «Maravilha» softwood cuttings / Z. Wiesman, J. Riov, E. Epstein // HortScience. – 1989. – Vol. 24. – P. 908–909.

Davis, T.D. Chemical control of adventitious root formation in cuttings / T.D. Davis, B.E. Haissig // Plant Growth Regul. Soc. Am. Q. – 1990. – Vol. 18. – P. 1–18.

Wiesman, Z. Enhancement of IBA stimulatory effect on rooting of olive cultivar stem cutting / Z. Wiesman, S. Lavee // Sci. Hortic. – 1995. – Vol. 65. – P. 189–198.

Haissig, B.E. Reduced irradiance and applied auxin influence carbohydrate relations in Pinus banksiana cut-tings during propagation / B.E. Haissig // Physiol. Plant. – 1990. – Vol. 78. – P. 455–461.

Correa, L.R. Effects of temperature on adventitious root development in microcuttings of Eucalyptus saligna Smith and Eucalyptus globulus Labill. / L.R. Correa, A.G. Fett-Neto // J. Therm. Biol. – 2004. – Vol. 29. – P. 315–324.

Hamann, A. Adventitious root formation in cuttings of loblolly pine (Pinus taeda L.): developmental sequence and effects of maturation / A. Hamann // Trees. – 1998. – Vol. 12. – P. 175–180.

Ragonezi, C. Adventitious rooting of conifers: influence of physical and chemical factors / C. Ragonezi, K. Klimaszewska, M.R. Castro, M. Lima, P. de Oliveira, M.A. Zavattieri // Trees. – 2010. – Vol. 24. – P. 975–992.

Martinez, P. In vitro regeneration of plantlets of Canary Island pine (Pinus canadiensis) / P. Martinez, I.S. Harry, T.A. Thorpe // Can. J. For Res. 1990. – Vol. 20. – P. 1200–1211.

Gomez, M.P. Axillary shoot proliferation in cultures of explants from mature Juniperus oxycedrus trees / M.P. Gomez, J. Segura // Tree Physiol. – 1994. – Vol. 15. – P. 625–628.

Ewald, D. Micropropagation of Larix species via organogenesis / D. Ewald. – In: Protocols for micropropa-gation of woody trees and fruits. – Dordrecht: Springer, 2007. – P. 125–136.

Ishii, K. Micropropagation of Pinus armandii var. amamiana / K. Ishii, Y. Hosoi, E. Maruyama. – In: Dordrecht: Springer, 2007. – P. 41–50.

Loureiro, J. Micropropagation of Juniperus phoenicea from adult plant explants and analysis of ploidy stability using flow cytometry / J. Loureiro, A. Capelo, G. Brito, E. Rodriguez, S. Silva, G. Pinto, C. Santos // Biol. Plant. – 2007. – Vol. 51. – P. 7–14.

Drake, P. Cytokinin pulse-mediated shoot organogenesis from cotyledons of Sitka spruce (Picea sitchensis (Bong.) Carr.) and high frequency in vitro rooting of shoots / P. Drake, A. John, J.B. Power, M.R. Davey // Plant Cell Tissue Organ Cult. – 1997. – Vol. 50. – P. 147–151.

Lopez-Escamilla, A.L. Adventitious bud formation from mature embryos of Picea chihuahuana Martinez an endangered Mexican spruce tree / A.L. Lopez-Escamilla, L.P. Olguin-Santos, J. Marquez, V.M. Chavez, R. Bye // Ann. Bot. – 2000. – Vol. 86. – P. 921–927.

Mohammed, G.H. The influence of acclimatization treatment and plantlet morphology on early greenhouse performance of tissue-cultured Douglas fir (Pseudotsuga menziesii (Mirb.) Franco) / G.H. Mohammed, W.E. Vidaver // Plant Cell Tissue Organ Cult. – 1990. – Vol. 21. – P. 111–117.

Skolmen, R.G. Aftercare procedures required for field survival of tissue culture propagated Acacia koa / R.G. Skolmen, M.O. Mapes // Comb Proc Int Plant Prop Soc. – 1978. – Vol. 28. – P. 156–164.

Harry, I.S. In vitro plantlet formation from embryonic explants of eastern white cedar (Thuja occidentalis L.) / I.S. Harry, M.R. Thompson, C.Y. Lu, T. A. Thorpe // Tree Physiol. – 1987. – Vol. 3. – P. 273–283.

Trigiano, R.N. Plant tissue culture concepts and laboratory exercises / R.N. Trigiano, D.J. Gray. – US/MA, CRC Press LLC., 1999–2000. – 454 p.

Сидорович, Е.А. Клональное микроразмножение новых плодово-ягодных растений / Е.А. Сидорович, Е.Н. Кутас – Минск, 1996. – 246 с.

Доспехов, Б.А. Методика полевого опыта / Б.А. Доспехов. – М.: Агропромиздат, 1985. – 350 с.

Боровиков, В.П. STATISTICA: Искусство анализа данных на компьютере / В.П. Боровиков. – Спб: Питер, 2001. – 688 с.

Аношенко, Б.Ю. Программы анализа и оптимизации селекционного процесса растений / Б.Ю. Аношенко // Генетика. – М.: Наука, 1994. – Т.30. – Приложение. – С. 8–9.